细胞培养基本操作
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笔者最近在培养 人脐静脉血管内皮细胞 (Human Umbilical Vein Endothelial Cells,HUVEC),记录一下细胞培养的一些基本操作。
从37°C含5%CO2的培养箱中拿出细胞培养瓶, 首先观察培养瓶内的液体是否混浊 (混浊说明细胞可能被污染),然后镜下观察细胞生长情况,当细胞长满70%以上时,可以传代。
25ml 培养瓶内加入 3ml PBS清洗两次,之后加入 0.5ml 胰酶(实验室用的仙人掌胰酶比较温和),放入培养箱消化3-5min(要确保细胞被消化下来),加入2ml培养基(ECM)终止消化。将液体收集到离心管, 350g 离心5min(这样才能沉淀细胞),之后去上清,向离心管加入6ml ECM,吹匀细胞(吹成单个细胞),向 三个 25ml培养瓶分别加2ml,之后在向培养瓶内补培养基到 6ml 。
25ml培养瓶内的细胞长满后,用3ml PBS清洗两次,胰酶消化离心之后,弃上清,加入4.5ml培养基和500μl DMSO (10%),吹匀细胞后分装到5个冻存管,每个1ml,放入-80冻存。
冻存的细胞从-80或者液氮拿出来后,立即放到37°C的温水中(注意冻存管内是否漏入液氮),融化之后, 350g 离心5min,弃上清,加入1ml ECM,吹匀细胞,加入25ml培养瓶,并补齐ECM到6ml。
注意:
一.培养瓶在盖盖子时要过酒精灯,并且培养瓶的盖子不能拧紧;
二.75ml培养瓶是10ml培养体系,加1.5ml胰酶消化,加 4倍量培养基 终止消化;6孔板是2.5ml培养体系(0.3ml胰酶消化),12孔板是2ml培养体系(0.1ml胰酶消化),24孔板是1ml培养体系(0.1ml胰酶消化),96孔板是100μl培养体系(1滴胰酶消化)。加完胰酶要轻微晃动培养瓶或培养板,使胰酶能够覆盖贴壁细胞;
三.清洗所用的PBS的量,是培养基量的一半;
四.25ml培养瓶长满细胞大约有 个细胞;
五.HUVEC传到第4代后就不能用了。
从37°C含5%CO2的培养箱中拿出细胞培养瓶, 首先观察培养瓶内的液体是否混浊 (混浊说明细胞可能被污染),然后镜下观察细胞生长情况,当细胞长满70%以上时,可以传代。
25ml 培养瓶内加入 3ml PBS清洗两次,之后加入 0.5ml 胰酶(实验室用的仙人掌胰酶比较温和),放入培养箱消化3-5min(要确保细胞被消化下来),加入2ml培养基(ECM)终止消化。将液体收集到离心管, 350g 离心5min(这样才能沉淀细胞),之后去上清,向离心管加入6ml ECM,吹匀细胞(吹成单个细胞),向 三个 25ml培养瓶分别加2ml,之后在向培养瓶内补培养基到 6ml 。
25ml培养瓶内的细胞长满后,用3ml PBS清洗两次,胰酶消化离心之后,弃上清,加入4.5ml培养基和500μl DMSO (10%),吹匀细胞后分装到5个冻存管,每个1ml,放入-80冻存。
冻存的细胞从-80或者液氮拿出来后,立即放到37°C的温水中(注意冻存管内是否漏入液氮),融化之后, 350g 离心5min,弃上清,加入1ml ECM,吹匀细胞,加入25ml培养瓶,并补齐ECM到6ml。
注意:
一.培养瓶在盖盖子时要过酒精灯,并且培养瓶的盖子不能拧紧;
二.75ml培养瓶是10ml培养体系,加1.5ml胰酶消化,加 4倍量培养基 终止消化;6孔板是2.5ml培养体系(0.3ml胰酶消化),12孔板是2ml培养体系(0.1ml胰酶消化),24孔板是1ml培养体系(0.1ml胰酶消化),96孔板是100μl培养体系(1滴胰酶消化)。加完胰酶要轻微晃动培养瓶或培养板,使胰酶能够覆盖贴壁细胞;
三.清洗所用的PBS的量,是培养基量的一半;
四.25ml培养瓶长满细胞大约有 个细胞;
五.HUVEC传到第4代后就不能用了。
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