如何正确采集血培养标本
如何正确采集血培养标本
采集血培养标本是有指征的，当患者体温超过38℃或低于36℃，患者寒战，查血常规白细胞计数大于10×109 /L,特别有“核左移”未成熟或杆状核白细胞时，粒细胞减少、成熟的多核白细胞<1×109 /L，血小板减少，患者出现皮肤黏膜出血、昏迷、休克或多器官衰竭，C反应蛋白升高，降钙素原升高等情况均应采集血培养标本。下面是我为大家带来的如何正确采集血培养标本的知识，欢迎阅读。
什么情况下应该采集血培养?
采集血培养标本是有指征的，当患者体温超过38℃或低于36℃，患者寒战，查血常规白细胞计数大于10×109 /L,特别有“核左移”未成熟或杆状核白细胞时，粒细胞减少、成熟的多核白细胞<1×109 /L，血小板减少，患者出现皮肤黏膜出血、昏迷、休克或多器官衰竭，C反应蛋白升高，降钙素原升高等情况均应采集血培养标本。当然不能除外感染，需明确病原菌时，也要采集血培养。
采集血培养标本有最佳时间吗?
血培养标本是有最佳采集时间的，尽可能在患者寒战开始时、高热高峰前30-60分钟内采血，另外在患者接受抗生素治疗前采血，但如果患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前取血。
为什么使用需氧和厌氧瓶并采集两套呢?
需氧瓶、厌氧瓶标本同时取有助于提高阳性率，细菌包括需氧菌、厌氧菌和兼性厌氧菌。兼性厌氧菌不论在有氧或无氧环境中都能生长，但以无氧时生长较好，大多数病原菌属于此类。因此，建议每套血培养同时接种至需氧瓶和厌氧瓶，有利于微需氧菌和厌氧菌的检出，但如果不能满足推荐的'采血量时，应首先满足需氧瓶。成人患者一套血培养标本需取血20ml,需氧瓶、厌氧瓶各10ml，一套标本的检测灵敏度是73.2%，两套标本的检测灵敏度是93.9%，可见采集两套标本可以明显提高检测灵敏度，所以取两套标本还是很有必要的。值得注意的是，如果取两套标本要分别在两个穿刺点采血。
怎样规范的采集血培养标本呢?
第一步：手卫生。用皂液和流动水或含酒精的快速手消毒剂进行手卫生。
第二步：消毒瓶塞。用酒精纱布消毒培养瓶塞，充分待干。
第三步：皮肤消毒。范围直径不小于5厘米，消毒后不可再用手接触。
① 先用70%-80%乙醇消毒不少于30秒。
②再用1%-2%碘酊消毒30秒或10%碘伏消毒60秒。
③ 再用70%-80%乙醇脱碘。
注意：对碘过敏的患者用70%-80%乙醇消毒2遍作用时间各3分钟，等酒精挥发干燥后采血。
第四步：采血。取血后不要更换针头直接注入血培养瓶。如果血量充足：先注厌氧瓶，后注需氧瓶，如果血量不足：优先注入需氧瓶，剩余注入厌氧瓶，因为真菌、绿脓杆菌、窄食单胞菌多长在需氧瓶内。
第五步：混匀。血培养标本接种到培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防血液凝固，不要大力摇晃。在每个培养瓶上分别标记采血部位和采血时间，注明是导管血还是外周血。
第六步：同法选择对侧穿刺部位采集第二套标本。
第七部：送检。血培养标本尽快送到实验室，任何的时间延误都会延迟或阻止检测细菌的生长。
注意：标本应从静脉取血，不宜从静脉导管或静脉留置口取血。若导管设施取血，不要弃去初段血，不用抗凝剂冲洗，必须同时静脉取血，以求对比和解释。不推荐使用真空采血针(蝴蝶针)将静脉血直接入瓶。不主张换针头入瓶。有血的培养瓶不可放入冰箱和冻箱保存。
未使用的血培养瓶在室温保存，被接种后不得冷藏或冷冻。
采集血培养标本需要严格无菌操作，但采集、送检、接种过程等仍然有可能有不可避免的污染，会不会有一些污染菌呢?
在多次血培养中单次培养下列细菌阳性，可认为是污染菌，包括凝固酶阴性葡萄球菌、棒状杆菌、微球菌、丙酸杆菌、芽孢杆菌。如多次血培养多次阳性，可能为条件致病菌，需要结合临床进行分析。
对于成人及青少年患者采集血培养标本的总体建议：
1. 血流感染、脑膜炎、骨髓炎、关节炎、肺炎患者，在治疗前于不同部位采血2套或3套，同一部位需间隔30min-1小时，每套20ml,需氧、厌氧各10ml。
2. 急性感染性心内膜炎患者，治疗前30分钟内采血3套。
3. 亚急性感染性心内膜炎患者，治疗前第一天采血2-3套，间隔30-60分钟，如结果为阴性，第二天和第三天再抽取血培养，24小时内采血不超过4套。
4. 导管相关性血流感染患者，采集2套血培养，1套从怀疑存在感染的导管获得，一套从外周获得，两套血同时采集。可先取外周血，5分钟内完成对导管血的采集。拔除导管时送导管尖端培养，并采集血培养标本。
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