如何用SDS法提取植物DNA?SDS.提取液如何配置？~~~大神们快来帮帮小学渣…
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药品试剂及耗材：
—— 液氮
—— 提取缓 冲液：500 mmol/L NaCl, 100 mmol/L Tris-HCl ph8, 50 mmol/L EDTA ph8，10 mmol/L 2-巯基乙醇（用前加入）
---- 20% SDS ph7.2 ---- 5 mol/L KAc
---- 氯仿：异戊醇（24：1） —— 异丙醇 —— 70%乙醇
—— TE缓冲液 :10 mmol/L Tris-HCl,1 mmol/L EDTA,PH8.0
—— 液氮
—— 提取缓 冲液：500 mmol/L NaCl, 100 mmol/L Tris-HCl ph8, 50 mmol/L EDTA ph8，10 mmol/L 2-巯基乙醇（用前加入）
---- 20% SDS ph7.2 ---- 5 mol/L KAc
---- 氯仿：异戊醇（24：1） —— 异丙醇 —— 70%乙醇
—— TE缓冲液 :10 mmol/L Tris-HCl,1 mmol/L EDTA,PH8.0
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追问
那提取的方法呢？
追答
1. 将1 g植物材料于液氮速冻，然后在研钵中将其磨碎，将粉末转至2 ml离心管中。
2. 加入1.2 ml预热至65℃的提取缓冲液(3V)，轻缓振荡混匀，加入120μl 20%SDS(达到终浓度 2%)，混匀，置65℃水浴中放置30分钟，不时颠倒混匀。
3. 加入0.45 ml 5M的醋酸钾（1/10V），混匀，冰浴20分钟，在10000 rpm离心20 min。需要的话，Miracloth纱布过滤除去沉淀，取上清液转入另一离心管中。
4. 加入等体积氯仿：异戊醇（24：1），轻轻颠倒混匀， 12000 rpm离心15 min。
5.转移上清液到另一新离心管中，加入0.7V冰预冷异丙醇，轻轻颠倒混匀，（见丝状沉淀）-20℃放置30分钟沉淀核酸。
6. 25℃，12000 rpm，离心10 min，收集沉淀。
7. 弃上清，70％乙醇洗两次。
8. 凉干DNA，溶于50 µl ddH2O（或TE biffer），4℃保存备用。
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