
求教关于野生菌转化及PCR方面的问题
各位大虾,小弟的课题是有关于一种野生菌的转化,该菌的启动子,SD序列等可在E.coli中正常表达蛋白,因此小弟选用pUC19,pBR322两种最普通的E.coli质粒进行...
各位大虾,小弟的课题是有关于一种野生菌的转化,该菌的启动子,SD序列等可在E.coli中正常表达蛋白,因此小弟选用pUC19,pBR322两种最普通的E.coli质粒进行转化,转化方法参照分子克隆上的E.coli氯化钙转化法,每次平均加入的质粒量为500ng-1ug,转化后平板上长出的克隆最多也就10个左右(做了相关菌体特征性验证,证明是我的目的菌落,不是杂菌),且有些为抗性菌(操作还没过关,见谅)。提取质粒电泳后在3000-5000bp内有条带,比marker稍暗,但清晰可见,但是每次双酶切后要么没有条带,要么没切开,虽然存在可能性(比如正好有个其他的杂菌,带有差不多大小的质粒,然后污染了,然后结合转化到了目的菌里,但这好像概率也实在太低了,而且我做了3次都出现了同样的情况),但还是百思不得其解,求教各位大虾,有没有遇到过类似的情况。。。。。。
PS:另外求教PCR大大们,小弟本想通过设计引物PCR扩增抗生素基因的方法来进行侧面验证(考虑到野生菌内有各种酶可能会对转化后的质粒造成影响,如甲基化等等导致酶切失败),但设计针对pUC19的Amp抗生素引物时无法扩增出相应的抗生素基因,电泳条带清一色的全都是引物二聚体,用olige软件设计时并未出现匹配度方面的问题,只是在引物二聚体的能量方面稍有超过,但软件并未提示出错,求教原因。。。。。。
附上引物序列pUC19 Amp抗性基因,860bp,位于全序列1626-2486,引物:上游TTACCAATGCTTAATCAGTGAGGCACCT 下游ATGAGTATTCAACATTTCCGTG 展开
PS:另外求教PCR大大们,小弟本想通过设计引物PCR扩增抗生素基因的方法来进行侧面验证(考虑到野生菌内有各种酶可能会对转化后的质粒造成影响,如甲基化等等导致酶切失败),但设计针对pUC19的Amp抗生素引物时无法扩增出相应的抗生素基因,电泳条带清一色的全都是引物二聚体,用olige软件设计时并未出现匹配度方面的问题,只是在引物二聚体的能量方面稍有超过,但软件并未提示出错,求教原因。。。。。。
附上引物序列pUC19 Amp抗性基因,860bp,位于全序列1626-2486,引物:上游TTACCAATGCTTAATCAGTGAGGCACCT 下游ATGAGTATTCAACATTTCCGTG 展开
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pUC19上面有些通用引物可以试一下,新的引物不能肯定会成功。把质粒提出来做PCR,而不是用菌落做。质粒一般来说是很容易出结果的。
有时候提的质粒质量不过关或者量太小,酶切就看不见是正常的。切没切开,有时候要与未切过的一起跑得试一试,直观的有时候看不出来
有时候提的质粒质量不过关或者量太小,酶切就看不见是正常的。切没切开,有时候要与未切过的一起跑得试一试,直观的有时候看不出来
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不太懂你的意思。。
首先,这两个质粒不能表达呀,只是克隆用的。你是用这两个质粒转化到你的野生菌里边?为了什么目的?
提取质粒后电泳比marker暗,你用的多少marker啊?市面上卖的一般最亮的一条是50ng的,一般用质粒小提试剂盒提出来的2-3ul都比这个亮吧。所以你确定是转进去了吗?
amp的话不会致死,过个两天一般就失效了,你的野生菌长多久会形成菌落呀?
感觉污染也是有可能的,实在不行就挑一个测个序,看到底是不是你要的东西。
首先,这两个质粒不能表达呀,只是克隆用的。你是用这两个质粒转化到你的野生菌里边?为了什么目的?
提取质粒后电泳比marker暗,你用的多少marker啊?市面上卖的一般最亮的一条是50ng的,一般用质粒小提试剂盒提出来的2-3ul都比这个亮吧。所以你确定是转进去了吗?
amp的话不会致死,过个两天一般就失效了,你的野生菌长多久会形成菌落呀?
感觉污染也是有可能的,实在不行就挑一个测个序,看到底是不是你要的东西。
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我用pUC19载入的目的基因里带有启动子,等于是一个表达载体,转进去之后检测结果没有表达,在E.coli里确定有表达。。。
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是不是污染呢?
感受态细胞污染,做转化的时候污染都是有可能的
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