如何用imagej分析免疫组化平均光密度值

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百度网友faadf46
高粉答主

2020-05-27 · 说的都是干货,快来关注
知道答主
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1、打开Image-Pro Plus 6.0软件,点击右下方的Done。点击file,点击open,打开你要选择组化图片,点击打开,得到如图所示。

2、点击file那一排的measure,选择calibration右侧下方的intensity。点击OD旁边的new,点击std. optical density,点击options,

3、点击255旁边的image,弹出如图所示对话框,点击图中空白地方,点击ok键。将incidental level改成255。

4、继续点击ok,点红色x,关闭。点击measure→count/size。

5、点击selecte colors,点击最左边像笔的图标,选免疫组化图片阳性蛋白表达区域,选择完毕,点击close。

6、点击表格中的view,选择statistic。得到mean那一栏和iod交叉的数值,就是mean of iod。

匿名用户
2017-09-02
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1、载入图像,选择菜单ImageJ→Type→8-bi,t将彩色图像变为8位灰度图像。2、选择菜单ImageJ→Adujst→Threshold,选择合适的分割阈值,直到阈值化后的图像中所有细胞都呈高亮显示为止,然后单击“Apply“按钮,则整幅图像变为白色背景上只有细胞的二值图像,在较高版本的ImageJ中有预设值,对于跳虫计数来说“triangle”模式相对较为合适,并且在计数过程中,要将高亮设置为红色而不是黑白对照,这样才能在接下的步骤中顺利进行。3、选择菜单ImageJ→Analyze→Analyzeparticles…,在弹出的成分分析设置窗口输入要计数的最大和最小细胞的像素数、细胞按大小分群的群数和分析结果的显示方式等选项,然后单击“OK”,软件自动计数和标记所有符合要求的跳虫。最后就是保存结果啦。总结下子,ImageJ软件固然好用,其对图片本身的要求也较高,光线要均匀,培养基质与培养物的色差要明显,这样才能在后期的处理过程中减少工作量。还需进一步解决的问题依然是存在的,在较少工作量的基础上为了获得清晰地图片,在拍摄过程中,就必须处理好放大倍数和视野大小两者的矛盾,但目前没有找到很好的契合点,不知是不是要在硬件上有所改动~~也就是说,会不会有种在相机有这样的功能,放大倍数提高的同时,视野范围不变呢~~~~~?
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