细菌16S微生物多样性研究实验方法及关键点
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1. 样品元基因组提取
1.1 样品元基因组抽提核心思想:
尽可能多的获得样本中各种微生物的基因组DNA。
1.2 样本元基因组提取的重要性:
最大程度获得样本中各种微生物的基因组DNA,为后续样本的分析和比较提供完整的微生物种类及丰度信息。否则,分析环节“形同虚设”,永远分析不出真实结果。
1.3 对样品的一些思考:
a)样本收集的难易程度;
b)样本的珍贵程度;
c)怎样用尽可能少的单个样本使用量来帮助客户完成研究目的;
d)怎样在实验开始前就确保客户结果的准确性;
e)复杂环境中的样本基因组如何能够更全面的获取。
1.4 元基因组提取的主要原理(核心步骤):
①通过高温化学裂解法和物理击打法充分裂解细胞;
②离心法除去杂质、抑制物等;去除破碎细胞中的蛋白质;
③纯化DNA;
④消化RNA。
1.5 元基因组提取的主要流程:
1)样品准备:
样本-80℃保存;
避免样本出现反复冻融,影响样本中微生物组成,样本均在冰盒或干冰上完成拿取和转移。
2)化学裂解+物理击打
I.化学裂解:
作用:采用化学方式破坏细胞膜和细胞核膜充分释放细胞内容物。
II.物理击打:
作用:针对细胞膜难以裂解或裂解不充分的微生物,采用玻璃珠碰撞产生剪切力进行物理干预破坏;
材料:玻璃珠。
3)酚类及生物碱干扰物的去除
PVPP:
作用:
a)去除酚类和生物碱;
b)可参与配制适合的缓冲溶液反复浸提体系中的DNA,同时吸附杂质。
4)蛋白质、杂质、抑制剂干扰物的去除
HTR等试剂
纯化DNA;
Rnase A 消化RNA;
获得DNA溶液;
2. PCR文库扩增
2.1 高保真pfu酶的使用:
作用:
①降低扩增环节碱基错配率;
②校正作用;
③保真性大于Taq酶;
④产生平末端。
2.2 最低循环数的控制:
a)循环数对PCR扩增的影响:
1)降低扩增环节碱基错配率;
2)校正作用;
3)保真性大于Taq酶;
4)产生平末端。
b)解决方法:
1)根据样本来源及类型,利用预实验对扩增反应条件进行摸索,用最低的循环数获得满足后续实验浓度要求的扩增产物。
2)因样本间存在质量差异等情况,应保持每个样本扩增的循环数统一。
c)扩增DNA模板浓度的均一性
根据样本类型和来源,将扩增时样本DNA浓度调整至一致,以免由于样本DNA浓度差异造成扩增后产生偏差,增加样本间的可比性。
d)建库扩增循环数
1)采用扩增形式进行接头添加;
2)利用最低循环数确保完成建库。
3.实验过程质控
3.1 阴、阳性对照设置
1)元基因组提取环节:
①设置阳性对照,监控提取效果;
②设置阴性对照,监控提取流程。
2)PCR环节:
①设置阳性对照,监控扩增效果;
②设置阴性对照,监控PCR操作流程;
③扩增抽提环节阴性对照,监控抽提是否有污染;
④扩增抽提环节阳性对照,验证抽提效果。
4.数据分析优先级的确定
4.1 下机数据分析优先级:
1)分析阳性对照:观察实验、测序环节是否有问题;
2)比较分析不同测序run之间的阳性对照,排除测序批次间的差异性。
3)按照要求分析该批次中的样本。
1.1 样品元基因组抽提核心思想:
尽可能多的获得样本中各种微生物的基因组DNA。
1.2 样本元基因组提取的重要性:
最大程度获得样本中各种微生物的基因组DNA,为后续样本的分析和比较提供完整的微生物种类及丰度信息。否则,分析环节“形同虚设”,永远分析不出真实结果。
1.3 对样品的一些思考:
a)样本收集的难易程度;
b)样本的珍贵程度;
c)怎样用尽可能少的单个样本使用量来帮助客户完成研究目的;
d)怎样在实验开始前就确保客户结果的准确性;
e)复杂环境中的样本基因组如何能够更全面的获取。
1.4 元基因组提取的主要原理(核心步骤):
①通过高温化学裂解法和物理击打法充分裂解细胞;
②离心法除去杂质、抑制物等;去除破碎细胞中的蛋白质;
③纯化DNA;
④消化RNA。
1.5 元基因组提取的主要流程:
1)样品准备:
样本-80℃保存;
避免样本出现反复冻融,影响样本中微生物组成,样本均在冰盒或干冰上完成拿取和转移。
2)化学裂解+物理击打
I.化学裂解:
作用:采用化学方式破坏细胞膜和细胞核膜充分释放细胞内容物。
II.物理击打:
作用:针对细胞膜难以裂解或裂解不充分的微生物,采用玻璃珠碰撞产生剪切力进行物理干预破坏;
材料:玻璃珠。
3)酚类及生物碱干扰物的去除
PVPP:
作用:
a)去除酚类和生物碱;
b)可参与配制适合的缓冲溶液反复浸提体系中的DNA,同时吸附杂质。
4)蛋白质、杂质、抑制剂干扰物的去除
HTR等试剂
纯化DNA;
Rnase A 消化RNA;
获得DNA溶液;
2. PCR文库扩增
2.1 高保真pfu酶的使用:
作用:
①降低扩增环节碱基错配率;
②校正作用;
③保真性大于Taq酶;
④产生平末端。
2.2 最低循环数的控制:
a)循环数对PCR扩增的影响:
1)降低扩增环节碱基错配率;
2)校正作用;
3)保真性大于Taq酶;
4)产生平末端。
b)解决方法:
1)根据样本来源及类型,利用预实验对扩增反应条件进行摸索,用最低的循环数获得满足后续实验浓度要求的扩增产物。
2)因样本间存在质量差异等情况,应保持每个样本扩增的循环数统一。
c)扩增DNA模板浓度的均一性
根据样本类型和来源,将扩增时样本DNA浓度调整至一致,以免由于样本DNA浓度差异造成扩增后产生偏差,增加样本间的可比性。
d)建库扩增循环数
1)采用扩增形式进行接头添加;
2)利用最低循环数确保完成建库。
3.实验过程质控
3.1 阴、阳性对照设置
1)元基因组提取环节:
①设置阳性对照,监控提取效果;
②设置阴性对照,监控提取流程。
2)PCR环节:
①设置阳性对照,监控扩增效果;
②设置阴性对照,监控PCR操作流程;
③扩增抽提环节阴性对照,监控抽提是否有污染;
④扩增抽提环节阳性对照,验证抽提效果。
4.数据分析优先级的确定
4.1 下机数据分析优先级:
1)分析阳性对照:观察实验、测序环节是否有问题;
2)比较分析不同测序run之间的阳性对照,排除测序批次间的差异性。
3)按照要求分析该批次中的样本。
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