SDS-PAGE检测蛋白质分子量的基本原理
蛋白质在聚丙烯酰胺凝胶中电泳时,它的迁移取决于它所带电荷以及分子大小和形状等因素。在聚丙烯酰胺系统中加入阴离子去污剂十二烷基磺酸钠(SDS),大多数蛋白质能与SDS按一定...
蛋白质在聚丙烯酰胺凝胶中电泳时,它的迁移取决于它所带电荷以及分子大小和形状等因素。在聚丙烯酰胺系统中加入阴离子去污剂十二烷基磺酸钠(SDS),大多数蛋白质能与SDS按一定比例结合,即每克蛋白质结合1.4g的SDS-复合物都带上相同密度的负电荷,它的量大大超过了蛋白质分子原有的电荷量,因而消除了蛋白质原有的电荷差别,使蛋白质分子电泳的迁移率主要取决于本身的分子量,而与蛋白质所带的电荷无关,在一定条件下,蛋白质的分子量的对数与电泳迁移率间呈负相关。
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蛋白质在聚丙烯酰胺凝胶中电泳时,它的迁移取决于它所带电荷以及分子大小和形状等因素。在聚丙烯酰胺系统中加入阴离子去污剂十二烷基磺酸钠(SDS),大多数蛋白质能与SDS按一定比例结合,即每克蛋白质结合1.4g的SDS-复合物都带上相同密度的负电荷,它的量大大超过了蛋白质分子原有的电荷量,因而消除了蛋白质原有的电荷差别,使蛋白质分子电泳的迁移率主要取决于本身的分子量,而与蛋白质所带的电荷无关,在一定条件下,蛋白质的分子量的对数与电泳迁移率间呈负相关。
操作步骤
1、凝胶制备:
用两块电泳玻璃板制成垂直板槽(不能漏胶),垂直放置.将配制好的分离胶溶液倒入,滴加入无离子水,待凝胶聚集后,倒出无离子水,用吸水纸吸干,倒入浓缩胶,再插入梳子.
2、上样:
分别取样品若干ml于离心管中,按1/1~1/5比例加入5×样品缓冲液,再沸水浴中加热3~5min,取出待用.用微量注射器分别吸取不超过30μl不同浓度的标准蛋白样品和试验样品注入样品槽.点样结束后,调节电泳仪电流到10mA(2~3mA/em),保持电流稳定不变,当溴酚蓝迁移到离分离胶底1~2cm时,即可停止电泳.
3、染色:
电泳完毕后,取出凝胶板,浸入染色液中,在37℃温箱中保温过夜.倒掉染色液,24h后,即可看到清晰的蛋白质条带.
操作步骤
1、凝胶制备:
用两块电泳玻璃板制成垂直板槽(不能漏胶),垂直放置.将配制好的分离胶溶液倒入,滴加入无离子水,待凝胶聚集后,倒出无离子水,用吸水纸吸干,倒入浓缩胶,再插入梳子.
2、上样:
分别取样品若干ml于离心管中,按1/1~1/5比例加入5×样品缓冲液,再沸水浴中加热3~5min,取出待用.用微量注射器分别吸取不超过30μl不同浓度的标准蛋白样品和试验样品注入样品槽.点样结束后,调节电泳仪电流到10mA(2~3mA/em),保持电流稳定不变,当溴酚蓝迁移到离分离胶底1~2cm时,即可停止电泳.
3、染色:
电泳完毕后,取出凝胶板,浸入染色液中,在37℃温箱中保温过夜.倒掉染色液,24h后,即可看到清晰的蛋白质条带.
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你少说了一点。
聚丙烯酰胺凝胶能够形成大小均匀的网格状结构,这种网格状结构能够对通过其中的蛋白质分子起到阻碍作用,而阻碍的程度取决于分子的大小。因为与SDS结合之后,分子的大小是受其分子量决定的,因此能够区分出蛋白质的分子量
聚丙烯酰胺凝胶能够形成大小均匀的网格状结构,这种网格状结构能够对通过其中的蛋白质分子起到阻碍作用,而阻碍的程度取决于分子的大小。因为与SDS结合之后,分子的大小是受其分子量决定的,因此能够区分出蛋白质的分子量
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你不是自己说了很多了吗。在我的理解,本来蛋白质的分子量就很大,不可能测量得很精确,因为使用的标尺也是一些标准蛋白质制成的marker(ladder)。你所引用的不是就有“大多数蛋白质能与SDS按一定比例结合,即每克蛋白质结合1.4g的SDS-复合物都带上相同密度的负电荷”吗,1g蛋白质对应一定的负电荷,然后复合物电荷数目不同电泳迁移率不同,跟标准蛋白一比较,就测出蛋白质分子量了
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